Tejido muscular estriado

-Objetivo

Observar las células del tejido muscular estriado de un trozo de carne de vaca (morcillo).

-Fundamento teórico

El tejido muscular es un tejido especializado en la contracción (función motora). Podemos distinguir tres variedades:

-Tejido muscular liso
-Tejido muscular estriado
-Tejido muscular cardíaco

El tejido muscular estriado está formado por células alargadas denominadas fibras. En ella encontramos numerosos núcleos de células no separadas por membrana. Esta organización se llama sincitio.
El citoplasma (sarcoplasma) contiene fibrillas llamadas (miofibrillas), ordenadas en una estructura característica: bandas claras y oscuras que se alternan para dar el aspecto estriado que da nombre a la fibra.
La contracción muscular se debe a la disposición de las moléculas de actina y de miosina que componen las miofibrillas.
Las fibras musculares se reúnen en haces. Estos, a su vez, se agrupan con otros hasta formar los paquetes que constituyen el músculo esquelético, llamado coloquialmente carne. Los nervios de la carne son las envolturas conjuntivas de los haces y paquetes de fibras.

-Materiales

-Microscopio
-Portaobjetos
-Cubreobjetos
-Frasco lavador
-Caja de Petri
-Aguja enmangada
-Pinzas de disección
-Alcohol etílico
-Azul de toluidina
-Trozo de carne

-Método

1.-Con la aguja enmangada, haz surcos paralelos a las fibras. Se separarán paquetes musculares. Desprende algunos y con las pinzas colócalos en un porta.

2.-Sobre la muestra vierte algunas gotas de alcohol y espera a que se evapore.

3.-Tiñe durante un minuto con una gota de azul de toluidina, sobre el porta. Lava con un hilo de agua sujetando las fibras.

4.-Deposita una gota de agua sobre el tejido, coloca el cubre, superpón una tira de papel de filtro y da unos golpecitos con el dedo para disgragar los haces de fibras.

5.-Observa la preparación con diferentes aumentos.

-Observaciones

-Conclusión

Como todas las muestras de tejido animal, la muestra en este caso era extremadamente fina, por lo que tuvimos que coger varias muestras hasta conseguir una correcta.

Tejido Adiposo

• Objetivo.

Observar las células del tejido adiposo (adipositos). Usando un microscopio, para observar las células de una tira de tocino.

• Fundamento teórico.

El tejido adiposo, o tejido graso, es un tejido conformado por células que acumulan lípidos en su citoplama: Los adipositos. El tejido adiposo, por un lado cumple funciones mecánicas: una de ellas es servir como amortiguador, protegiendo y manteniendo en su lugar los órganos internos así como a otras estructuras más externas del cuerpo, también tiene funciones metabólicas y es el encargado de almacenar grasas en el organismo.

• Materiales.

1. Microscopio.
2. Portaobjetos.
3. Cubreobjetos.
4. Frasco lavador.
5. Bisturí.
6. Forml.
7. Sudán III.
8. Tocino de cerdo.
9. Frasco de tinción.

• Método.

Para empezar, con ayuda del bisturí, cortamos una finísima capa de grasa del tocino de cerdo y lo colocamos en un porta objetos, seguidamente situamos el portaobjetos encima del frasco de tinción y añadimos unas gotas de formol y dejamos reposar 4 minutos. Una vez pasados los 4 minutos, repetimos el proceso, pero en vez aplicar formol, añadimos Sudán III y dejamos actuar 5 minutos. Por último, lavamos la muestra con agua . Ya podemos observar la muestra en el microscopio.

• Observaciones.

Gracias a que la muestra era lo suficientemente fina , pudimos observar sin ningún problema las células (Adipositos) del tejido adiposo. Lamentablemente esta vez no pudimos sacar fotos.

• Conclusión.

Ya que necesitábamos una muestra muy fina, tuvimos que teñirla con 2 componentes distintos para que la luz no nos impidiera observar la muestra. Un dato bastante interesante en esta práctica fue que el Sudán III no consiguió teñir los espacios intercelulares, ya que este componente era específico para Lípidos.

• Cuestiones

1. ¿Por qué hay que teñir la muestra con colorante Sudán III?
2. Observaras que el espacio intercelular no aparece teñido con colorante. ¿Por qué?
3. Además del tocino. ¿Que otras partes de un animal se te ocurriría teñir con Sudán III para observar sus células?

1. Hay que teñirla con colorante Sudán III, ya que es un colorante específico para los lípidos, y debido a que no hay lípidos en los espacios intercelulares solo se teñirán las células adiposas (Adipositos) las cuales son las que queremos observar.
2. En los espacios intercelulares no hay células lípidas, y debido a que el colorante Sudán III solo tiñe las células lípidas, estos espacios no aparecen teñidos.
3. En algunos órganos internos de animales, como los riñones.

Tejido conjuntivo.

-Objetivo

Analizar la muestra de tejido conjuntivo extraído de la piel de pollo y tratar de comparar con el microscopio las ilustraciones de la ficha de ayuda con las imágenes que sacaremos del microscopio.

-Fundamento teórico

El tejido conjuntivo es uno de los tejidos conectivos que forman parte de los animales. Su principal característica es su elevado número de tejidos intercelulares, los cuales son elementos clave en la cohesión o separación de los elementos que componen los órganos y sistemas. Es parte del grupo de los tejidos laxos.

-Material

1. Microscopio
2. Portaobjetos
3. Cubreobjetos
4. Frasco lavador
5. Pinzas de disección
6. Aguja enmangada
7. Azul de metileno
8. Papel de filtro
9. Alcohol etílico

-Método

Empezamos separando con las pinzas la piel de pollo, para así poder observar una pequeña "telilla" transparente, la cual, usaremos para esta investigación . Seguidamente, arrancamos una porción de dicha telilla con ayuda de la aguja enmangada o con una esquina del portaobjetos. estiramos bien esa muestra de forma que quede bien extendida sobre el portaobjetos, echamos unas gotas de alcohol y esperamos 2 minutos, después vertemos una gota de azul de metileno y dejamos reposar 1 minuto, una vez pasado el minuto, limpiamos la muestra con agua colocamos el portaobjetos una vez eliminado y secado el exceso de agua y colorante con el papel de filtro. La muestra ya está lista para ser examinada.

-Observaciones

Debido a que le muestra era un poco mas gruesa de lo recomendable , no pudimos ver con claridad lo esperado, pero a pesar de ello , conseguimos ver algunas células coloradas (por el azul de metileno) del tejido conjuntivo.

-Conclusión

Conseguimos observar varias células del tejido conjuntivo, lo mas dificil de este proyecto fué conseguir una muestra aceptable del tejido conjuntivo, ya que varias de las muestras obtenidas eran demasiado gruesas.

Tejido estratificado: Mucosa bucal.

-Objetivo:

Observar las células de la mucosa bucal e intentar diferenciar las partes que componen sus células.

-Fundamento teórico:

La capa mas externa del interior de la boca esta cubierto por una capa de células denominada mucosa bucal. También se le suele llamar epitelio de revestimiento o pavimentoso.

Una segunda clasificación la clasifica como un epitelio planificado estratificado no queratinizado, es decir, presenta varias capas de células planas, las cuales solo las más superficiales tienen núcleo.

-Material

• Palillos higiénicos
• Pinzas de madera
• Portaobjetos
• Cubreobjetos
• Azul de metileno
• Mechero de alcohol
• Microscopio
• Cuentagotas
• Frasco lavador

-Método

Con un palillo, se raspa el interior de la boca y se coloca la muestra obtenida en un portaobjetos, seguidamente le añadimos una gota de agua a la muestra. Posteriormente, secamos la muestra con un mechero de alcohol . La muestra debe estar a 10 centímetros del fuego, es decir , el portaobjetos no debe tocar nunca la llama , se sujeta el porta objetos con una pinza de madera y se mueve la muestra de izquierda a derecha para evitar que el calor queme la muestra o fraccione el portaobjetos.

Una vez secada la muestra, comprobamos su temperatura con el dorso de la mano, y dejamos enfriar 1 minutos, a continuación añadimos una gota de azul de metileno a la muestra y dejamos reposar un minutos. Una vez pasado el minuto lavamos la muestra con unas gotas de agua y colocamos un cubreobjetos sobre la muestra , y con un papel de filtro recubrimos la muestra en la parte que se halle el cubreobjetos y presionamos suavemente para quitar el exceso de agua de la muestra. Ahora ya podemos observar la muestra con el microscopio

-Observaciones

En el microscopio , pudimos observar las células estratificadas de la pared bucal de una compañera.

-Conclusión

En la muestra observada , podemos apreciar la presencia de bacterias, lo cual demuestra que por mucha higiene, es 100% imposible que tengamos la boca totalmente limpia.

¿Cuales son los componentes de los analgésicos?

-Objetivo

El objetivo principal de esta practica era averiguar, sin leer el prospecto , si el principio activo de algunos analgésicos era el ácido acetil salicílico, siendo su principal función aliviar la inflamación y el dolor leve. También queríamos averiguar algunos de los excipientes de estos analgésicos.

-Fundamento teórico

Para cualquier persona enferma el principal alivio sería la supresión del dolor, y no hay mejor medicamento para esta tarea que los analgésicos.

Actualmente, uno de los analgésicos mas utilizados y de mayor efecto , es el "Ácido acetilsalicílico" . En 1763 Edward Stone describió en su trabajo que había administrado el extracto de la corteza de sauce blanco ( las propiedades curativas y calmantes de este extracto se conocían desde la antigüedad) en forma de té o cerveza a 50 pacientes que padecían fiebre a los cuales posteriormente se le aliviaron los síntomas. Investigaciones posteriores condujeron al principio activo de esta planta a la que los científicos llamaron salicina.

-Material

• Tres comprimidos analgésicos diferentes.
• Tubos de ensayo
• Gradillas para tubos de ensayos
• Vaso de precipitado
• Papel indicador del ph
• Etiquetas adhesivas
• Nitrato de hierro III
• Reactivo de Fehling A
• Reactivo de Fehling B
• Agua destilada
  

-Procedimiento

Se disgrega cada una de las píldoras a las que posteriormente se clasificará como A, B y C y se introduce cada una en un tubo de ensayo diferente. Se ha de llenar cada tubo de ensayo con agua destilada y se etiquetan las muestras. Pasados 10 segundos, se ha de agitar cada tubo tapándolo con el dedo.

Una vez asentadas las muestras, introduciendo un papel indicador de ph. Observamos el nivel de cada muestra y clasificamos.

Para averiguar si el principio activo de cada muestra es el ácido acetilsalicílico, se separan 3 ml de cada muestra en otros tubos de ensayo y se le añaden 5 o 6 gotas de nitrato de hierro III . Si la muestra adquiere un tono morado, esto significa que el principio activo es el ácido acetil salicílico.

Para averiguar algunos excipientes de cada muestra, ( lo buscados en esta practica era el almidón y la lactosa, ambos glúcidos) para ello vertemos 4 ml de fehling A a 6 ml de muestra . Posteriormente repetimos el proceso con el fehling B . Una vez mezclados , los calentamos al baño maría . Si las muestras adquieren un tono azulado , da positivo para lactosa. Si es rojizo, da positivo para almidón.

-Observaciones

Esta practica fué bastante sencilla , aunque poseía varios pasos , lo cual, la alargaba un poso. Pero la mayoría de pasos eran similares por lo que su dificultad era casi nula. Lamentablemente en esta practica nuestras muestras no poseían almidon por lo que no pudimos apreciar el proceso de reacción de este.

-Conclusión

Esta practica no fue nada nuevo ya que en clases anteriores habíamos leído prospectos de algunos medicamentos , y nos habíamos informado haciendo algunas actividades acerca de este tema. En nuestras muestras solo una tenía ácido acetilsalicílico y 2 tenían almidón así que podemos decir que nos tocaron unas muestras bastantes simples.

Tercera práctica - Observación del tejido epitelial ciliado

-Objetivo

Observar el tejido epitelial ciliado del sujeto en cuestión. Comprobar cómo las células siguen funcionando.

-Fundamento teórico

El epitelio está compuesto por células muy cercanas entre sí. El epitelio y el tejido conectivo se encuentran separados por una membrana basal.

Los epitelios recubren todas las superficies libres del organismo, tanto las superficies internas como las externas. Los epitelios también recubre grandes cavidades internas del organismo -cavidades pulmonares, cavidad cardíaca y abdomen y se le conoce con el nombre de mesotelio. Además, recubre la superficie libre interna de los vasos sanguíneos y linfáticos, donde se le denomina endotelio.

Los epitelios cumplen diferentes funciones: protegen las superficies libres contra el daño mecánico, la entrada de microorganismos y regulan la pérdida de agua por evaporación; también es importante en cuanto al sentido del tacto, puesto que contiene terminaciones nerviosas sensitivas. Sobre las superficies intern

as, la función es de absorción o secreción.

-Clasificación de los epitelios:

Asimismo, los epitelios se pueden clasificar de acuerdo al número de capas celulares y a la forma de las células en la capa más superficial. Si sólo contiene una capa de células, se le denomina simple; si hay 2 o más capas se le denomina estratificado. Las células varían en cuanto a su forma: planas, cúbicas o cilíndricas.teral:

· Bivalvo

· Cuchillo o navaja.

· Cuentagotas.

· Portaobjetos.

· Cubreobjetos.

· Pinzas.

· Microscopio.

Usando el cuchillo o navaja, abrimos el bivalvo, introduciendo el instrumento entre las dos valvas. Con un poco de fuerza y repetidamente, forzamos al bivalvo a abrirse.

Al abrirlo, se debe obtener una muestra del líquido, y limpiar el resto, todo ello con cuentagotas.

Inmediatamente después, obtenemos un trozo de branquia a través de de las pinzas, arrancándolas en el proceso si es necesario.

Se coloca la muestra en el microscopio y se analiza.

-Conclusión:

Las células de las branquias son pulsátiles aún cuando el individuo está incapacitado. Por lo cual, son autónomas, y trabajan independientemente del individuo. Sin embargo, sin el individuo, al poco tiempo no les llegarán los nutrientes, y morirán.

Segunda práctica - Presión arterial

Se actualizará a una nueva versión pronto.

Datos:

Ritmo cardíaco de Ayrton: 88 pulsaciones por minuto

Ritmo cardíaco de David: 96 pulsaciones por minuto

Tensión arterial alta de Ayrton: 118

Tensión arterial baja de Ayrton: 79

Tensión arterial alta de David: 119

Tensión arterial baja de David: 82

Primera práctica - Análisis de sangre

Paciente número 1 -> Sufre de anemia, debido a una escasez de eritrocitos, hemoglobina y valores hematócritos.

Paciente número 2-> Tiene una nefritis crónica debido a elevados niveles de leucocitos, monocitos,urea, ácido úrico y una velocidad de sedimentación elevada.

Paciente número 3-> Sufre de Arteriosclerosis debido a altos niveles de triglicéridos y colesterol.



Paciente número 4 -> Sufre de diabetes debido a altos niveles de glucosa y colesterol.

Paciente número 5 -> Sufre de Cirrosis, esto se prueba por una cantidad mayor a lo normal de leucocitos, neutrófilos, linfocitos, monocitos, blirrubina y transaminas, asi como bajos niveles de urea y una menor velocidad de sedimentación. Uno de los efectos secundarios de la cirrosis es la ictericia y el infarto.



Paciente número 6 -> Sufre de Policitemia y tiene pérdidas acuosas debido a los altos valores de Eritrocitos y un elevado valor hematócritos.

Sales de rehidratación oral

SRO son las siglas en español de "Sales de rehidratación Oral", un compuesto de sales que se administra en casos de deshidratación. Su distribución ha sido promocionada por la Organización Mundial de la Salud (OMS), principalmente en países pobres donde la infraestructura higiénica y sanitaria es deficiente. En estos lugares una de las mayores causas de muerte entre infantes menores de cinco años es la deshidratación provocada por la diarrea.

Según la OMS las SRO son la manera más sencilla, efectiva y barata de mantener a los niños con vida durante episodios severos de diarrea.

Se distribuye normalmente en sobres de bajo costo, cuyo contenido debe disolverse en un litro de agua.

Diversos países han adoptado la medida de distribuir, de manera gratuita, SROs con la misma fórmula propuesta por la OMS. Un ejemplo de ellos es México, donde la fórmula adopta el nombre de Vida Suero Oral; esta última ha resultado de utilidad para prevenir numerosos casos de deshidratación por diarrea en el país.

La OMS ya ha recomendado una solución rehidratante en forma de sobres que se vende en farmacias. Se echa un sobre en un litro de agua. Su contenido es :

• 89g de cloruro potásico
• 34g de cloruro sódico
• 2,5g de bicarbonato sódico
• 20g de glucosa.

En caso de necesitar sales de rehidratación oral y no tenerlas disponibles, un método casero que se recomienda es diluir en un litro de agua 8 cucharaditas rasas de azúcar y una cucharadita rasa de sal de mesa. A esta solución se le denomina SAS (Solución de Azúcar y Sal). No es tan eficiente como la que se produce de manera industrial, pero cumple su función. Para otros profesionales esta es una salida como última alternativa, ya que es muy imprecisa: ¿cual es el tamaño de una cucharita? ¿da igual sal gorda que sal refinada? ¿da igual azúcar refinada que azúcar en basto o azúcar moreno? En un niño de meses estas variaciones pueden ser suficientes como para originar un coma hiperosmolar. Dado su ínfimo coste en la mayoría de los países, estos sobres preparados pueden tenerse en casa de forma habitual, como medida preventiva.

La OMS sigue mejorando permanentemente la fórmula de las SRO a fin de hacerlas más eficaces.

http://www.youtube.com/watch?v=ti5-7ihjr4E

Para la gran mayoria de los paises que utilizan este metodo, ha sido un acto de nobleza que sean suministrados gratuitamente, ya que asi aseguran la preservación de la vida de las personas que no son capaces de permitirse el lujo de evitar su uso.